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2024年12月29日发(作者:脚本实现网页自动填表)

Western blot相关试剂

哺乳动物蛋白抽提试剂盒:购于北京康为世纪生物科技有限公司(Cat. No.

CW0089),蛋白酶抑制剂混合物-20 ℃保存,其他组分室温保存。

BCA蛋白定量试剂盒:购于北京康为世纪生物科技有限公司(Cat. No.

CW0014),BSA标准品4 ℃保存,其他组分室温保存。

2×还原型SDS-PAGE上样缓冲液:购于北京康为世纪生物科技有限公司(Cat.

No. CW2339),-20 ℃保存。

丙稀酰胺 (Acrylamide, Acr):购于Amresco,室温保存。

30%丙烯酰胺溶液:将0.88 g甲叉双丙稀酰胺和29.28 g丙烯酰胺溶解在超

纯水中并定容至100 ml,滤纸过滤,4 ℃避光保存。

1.5 mol/L Tris-HCl 分离胶缓冲液 (pH=8.8):将18.17 g Tris溶解在超纯水

中并定容至100 ml,浓盐酸调pH至8.8,4℃保存。

1.0 mol/L Tris-HCl 浓缩胶缓冲液 (pH=6.8):将12.11 g Tris溶解在超纯水

中并定容至100 ml,浓盐酸调pH至6.8,4℃保存。

十二烷基硫酸钠 (Sodium dodecyl sulfate, SDS):购于Sigma,室温保存。

10% SDS溶液:称取10 g十二烷基硫酸钠溶解在超纯水中并定容至100 ml,

室温保存。

过硫酸铵 (Ammonium persulfate, APS):购于Sigma,室温保存。

10% APS溶液:称取0.1 g过硫酸铵溶解在l ml超纯水中,临用现配。

TEMED:购于Amresco,4℃保存。

5×蛋白电泳缓冲液:称取93.85 g甘氨酸、15.09 g Tris和5.0 g SDS溶解在

超纯水中并定容至1000 ml,室温保存,使用时5倍稀释。

预染蛋白marker:购于Fermentas(Cat. No. SM1181;Lot No. 00102717),

-20 ℃保存。

考马斯亮蓝染色液:称取0.25 g考马斯亮蓝,加入45 ml甲醇、45 m1超纯

水和10 ml冰醋酸,混匀,室温保存。

脱色液:分别量取45 m1甲醇、45 m1超纯水和10 ml冰醋酸,混匀,临用

现配。

PVDF膜:孔径为0.22 μm,购于Hybond。

Whatman 3mm滤纸:购于上海华舜生物工程有限公司。

转膜缓冲液:称取5.8 g Tris、2.9 g 甘氨酸和0.37 g SDS,加入200 ml甲醇

并用超纯水定容至1000 ml,室温保存。

Western Blot膜快速封闭液:购于普利莱基因技术有限公司(Cat. No. P1620),

4℃保存。

脱脂奶粉:购于内蒙古伊利实业集团股份有限公司,4℃保存。

抗体稀释液:称取5 g脱脂奶粉溶解于100 ml洗膜缓冲液,4℃保存。

1.0 mol/L Tris-HCl (pH=8.0):将12.11 g Tris溶解在超纯水中并定容至100 ml,

浓盐酸调pH至8.0,4℃保存。

洗膜缓冲液:称取8.8 g NaCl,加入20 ml 1.0 mol/L Tris-HCl (pH=8.0)和5 ml

Tween20搅拌混匀,用超纯水定容至1000 ml,室温保存。

Immobilon Western Chemiluminescent HRP Substrate:购于Millipore(Lot No.

1227902),4℃保存。

其他试剂均为国产分析纯。

SDS-PAGE电泳凝胶按以下配方配制:

试剂

超纯水

30%丙烯酰胺溶液

1.5 mol/L Tris(pH=8.8)

1.0 mol/L Tris(pH=6.8)

10%SDS

10%APS

TEMED

总体积

加样量 (ml)

12% 分离胶

4.8

6.0

3.9

0.15

0.15

0.006

15.0

5% 浓缩胶

4.2

0.99

0.75

0.06

0.06

0.006

6.0

Western bolt检测细胞中目的蛋白的表达水平

总蛋白的提取

选取三瓶生长状态良好且处于对数生长期的细胞,细胞经胰酶消化后收集于

EP管中,3,000 r/min离心3 min。弃上清,每支EP管中加入250 μl的蛋白抽提

试剂(蛋白抽提试剂:蛋白酶抑制剂混合物=99:1),漩涡震荡混匀5 min,冰浴

20 min。4℃,14,000×g离心10 min, 将上清液以每管50 μl装于PCR管中,-80℃

保存。

BCA蛋白定量法测定蛋白浓度

1) 稀释BSA标准品:用超纯水按照下表稀释BSA标准品。

管号

A

B

C

D

E

F

G

超纯水(μl)

0

200

200

200

200

400

200

BSA标准品(μl)

100

200

200(从B管取)

200(从C管取)

200(从D管取)

100(从E管取)

0

BSA标准品终浓度(μg/ml)

2000

1000

500

250

125

25

0

2) 配置BCA工作液:根据BSA标准品和待测蛋白样品的数量,将试剂A

和试剂B以50:1的体积比混匀。

3) 绘制标准曲线:分别将稀释好的A至G管中的BSA标准品分装到干净

试管中,每个试管分装100 μl,每个浓度做3个平行反应。同样,将适度稀释后

的100 μl待测样品蛋白也分装入干净试管,每个浓度做3个平行反应。向试管中

加入2 ml BCA工作液,充分混匀后置于37℃水浴箱中孵育30 min。将试管冷却

至室温后,用分光光度计测定562 nm处每个样品及BSA标准品的吸光值。以

BSA标准品的浓度为横坐标,对应562 nm处的吸光值为纵坐标,绘制标准曲线,

得到标准曲线方程。

4) 测定并计算样品蛋白浓度:将待测样品蛋白的吸光值带入标准曲线方程

得到样品蛋白浓度。

SDS-PAGE分离蛋白

1) 制胶:将玻璃板依次用纯水和100 % 乙醇擦洗干净,干棉球擦干后安装。

配制12%的分离胶15 ml,用移液器将6.5 ml配制好的分离胶沿玻璃板一侧注入

两块玻璃板的间隙中,注意不产生气泡。轻柔地在每块胶顶部加入2.0 ml纯水用

来阻止空气中的氧气对凝胶聚合的抑制,于37℃孵箱内静置35 min。待凝胶完

全聚合后,弃去顶层纯水,配置并加入2.0 ml的5 %浓缩胶,插入1.5 ml梳子,

避免产生气泡,于37℃孵箱内静置35 min。待凝胶完全凝固后,小心拔去梳子,

将凝胶从制胶板分离并放入电泳槽内,同时向电泳槽内缓慢注入300 ml 1×蛋白

电泳缓冲液。每次同时需制两块胶,一块用于考马斯亮兰染色,另一块用于转膜

及后续试验。

2) 上样:根据蛋白样品的浓度计算出30 μg蛋白样品的上样体积,并将相

应的蛋白样品与2×还原型SDS-PAGE上样缓冲液按体积比1:1混匀。沸水浴

5 min使蛋白变性,瞬时离心后用微量移液器将蛋白样品和上样缓冲液混合物加

入上样孔。同时在单独的一个上样孔中加入5 μl的预染蛋白marker。

3) 电泳:恒压80 V,电泳30 min左右,待溴酚兰前缘到达浓缩胶和分离胶

的交界面时,将电压提高到l00 V,继续电泳直至溴酚兰前缘距离底边约1.0 cm

左右时,停止电泳。小心取出凝胶,切去浓缩胶和多余的分离胶。切好的两块胶

一块用于考马斯亮兰染色,一块用于转膜及后续试验。

考马斯亮蓝染色

将一块切割后的分离胶放置于装有考马斯亮蓝染色液的培养皿中,于脱色摇

床上室温均匀摇动40 min。弃去考马斯亮蓝染色液,向培养皿中加入脱色液,于

脱色摇床上室温脱色15 min,一共脱色三次。最后可见凝胶中出现均匀的蓝色蛋

白条带。

转膜和抗体孵育

1) 转摸前准备:根据用于转膜的分离胶的大小裁剪出合适的PVDF膜一张

和滤纸四张。PVDF膜依次在甲醇中活化30 s,超纯水中浸泡5 min,转膜缓冲

液中平衡10 min。四张滤纸和泡沫垫也同时在转膜缓冲液中平衡10 min。

2) 制做“凝胶三明治” :“凝胶三明治”从负极到正极依次为:泡沫垫→滤

纸两层→分离胶→PVDF膜→滤纸两层→泡沫垫,注意排除各层之间的气泡。

3) 转膜:将“凝胶三明治”放入转印槽中,加入转膜缓冲液,转印槽周围放

上碎冰用来降温。接通电源,恒流200 mA转膜1 h。

4) 抗体孵育:取出PVDF膜,可见预染蛋白maker条带,注意区分PVDF

膜的正反。Western Blot膜快速封闭液室温封闭PVDF膜1 h;将PVDF膜转入稀

释好的一抗中,室温孵育2 h;取出PVDF膜,洗膜缓冲液洗涤3次,每次5 min;

再将PVDF膜转入稀释好的二抗中室温孵育1 h,再取出PVDF膜,洗膜缓冲液

洗涤3次,每次5 min。

5) 曝光成像:分别取Immobilon Western Chemiluminescent HRP Substrate试

剂盒中的A液和B液各0.5 ml,混匀后均匀滴在PVDF膜上,采用Chemi Doc XRS

凝胶成像系统和Image Lab软件采集图像。

图像分析与统计处理

采用Image J图像分析软件分析结果,测定蛋白条带的绝对积分灰度值

(Integrated Gray- scale Value, IGV)。以目的蛋白条带和内参蛋白条带的灰度值之

比,既相对积分灰度值(relative IGV, rIGV)来反映目的蛋白的相对表达量 (IGV

=蛋白条带平均灰度值×面积;rIGV=IGV

目的蛋白

/ IGV

内参蛋白

)。SPSS 17.0统计软件

对结果进行单因素方差分析,两两比较采用LSD法,检验水准为0.05。


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